Oksydaza ksantynowa jest definiowana jako enzym o aktywności oksydazy (EC 1.17.3.2)[5]. To samo białko kodowane przez genXDH może wykazywać aktywność dehydrogenazy ksantynowej (EC 1.17.1.4)[6]. Większość białka w wątrobie występuje w formie o aktywności dehydrogenazy ksantynowej, jednak może być ono przemienione w oksydazę ksantynową poprzez odwracalne utlenienie grup sulfhydrylowych (−SH) lub nieodwracalne modyfikacje proteolityczne[7][8].
Katalizowane reakcje
Przy udziale oksydazy ksantynowej katalizowane są następujące reakcje:
Oksydaza ksantynowa może również katalizować przemiany niektórych puryn, pteryn oraz aldehydów, np. efektywnie katalizuje przemianę 1-metyloksantyny (metabolitu kofeiny) do kwasu 1-metylomoczowego; natomiast wobec 3-metyloksantyny wykazuje niewielką aktywność katalityczną[9].
W niektórych okolicznościach może umożliwić wytworzenie jonu nadtlenkowego[6]:
Ponieważ oksydaza ksantynowa jest enzymem wytwarzającym nadtlenki o ogólnej niskiej swoistości[10], więc może łączyć z innymi związkami oraz enzymami i tworzyć reaktywne utleniacze, a także utleniać substraty.
Początkowo sugerowano, że bydlęca oksydaza ksantynowa (z mleka) posiada miejsce wiążące do redukcji cytochromu c. Jednak teraz wiadomo, że za mechanizm redukcyjny cytochromu c odpowiada produkt uboczny działania oksydazy ksantynowej anionorodnik ponadtlenkowy (O2–•), konkurencyjnie hamowany przez anhydrazę węglanową[11].
Kolejną reakcją katalizowaną przez oksydazę ksantynową jest rozkład S-nitrozotioli, RSNO (reaktywnej formy azotu) do tlenku azotu (NO), który reaguje z anionorodnikiem ponadtlenkowym tworząc w warunkach tlenowych nadtlenoazotyn (ONOO-)[12].
W wyniku utleniania aldehydu octowego w obecności katalazy i wodorowęglanu, oksydaza ksantynowa wytwarza anionorodnik węglanowy (CO3-•) będący silnym utleniaczem jednoelektronowym. Sugeruje się, że anionorodnik węglanowy jest wytwarzany w jednym z centrów redoks enzymu przy udziale nadtlenowęglanu[10].
Struktura
Jest to duże białko o masie cząsteczkowej 270 kDa zawierające dwie grupy flawinowe (związane jako FAD), 2 atomy molibdenu i 8 atomów żelaza w jednostce enzymatycznej. Atomy molibdenu są zawarte w kofaktorach - molibdenopterynach, które stanowią centrum aktywne enzymu. Atomy żelaza są częścią centrum żelazowo-siarkowegoferrodoksyny [2Fe-2S] i biorą udział w reakcjach przeniesienia elektronów.
Mechanizm katalityczny
Miejsce aktywne oksydazy ksantynowej jest zbudowane z molibdenopteryny (zawierającej atom molibdenu); jest regulowane przez terminalny atom tlenu, atomy siarki oraz terminalny jon wodorotlenowy[13]. W reakcji wytworzenia kwasu moczowego z ksantyny atom tlenu jest przenoszony z molibdenu na ksantynę (w reakcji tej biorą udział kofaktory)[14]. Przekształcenie do formy wyjściowej centrum aktywnego molibdenopteryny wymaga udziału wody. Jak w przypadku innych oksydoreduktaz zawierających molibden, atom tlenu włączany do substratu przez oksydazę ksantynową pochodzi raczej z wody niż z cząsteczki tlenu.
Znaczenie kliniczne
Oksydaza ksantynowa jest enzymem wytwarzającym nadtlenki. Stwierdzono wzrost jej aktywności w surowicy krwi oraz w płucach podczas infekcji wirusem grypy typu A, co prowadzi do szkodliwego wzrostu stężenia nadtlenków[15].
Podczas ciężkiego uszkodzenia wątroby dochodzi do uwolnienia oksydazy ksantynowej do krwiobiegu, w związku z tym badanie oznaczające stężenie oksydazy ksantynowej może pozwolić na ocenę stanu wątroby[16].
W związku z tym, że oksydaza ksantynowa należy do enzymów szlaku metabolicznego, w wyniku działania którego wytwarzany jest kwas moczowy, jej inhibitor, allopurynol, jest lekiem stosowanym w leczeniu dny moczanowej - schorzenia w któremu towarzyszy hiperurykemia. Ponieważ oksydaza ksantynowa jest zaangażowana również w metabolizm 6-merkaptopuryny, należy zachować szczególną ostrożność przy jednoczesnym stosowaniu allopurynolu oraz 6-merkaptopuryny (lub jej proleku, azatiopryny).
Ksantynuria jest rzadką chorobą genetyczną, w której brak oksydazy ksantynowej prowadzi do wysokiego stężenia ksantyny we krwi, czego następstwem mogą być problemy zdrowotne takie jak niewydolność nerek. Nie ma swoistego leczenia tej choroby. Lekarze zalecają chorym unikanie produktów z wysoką zawartością puryn w diecie oraz przyjmowanie dużej ilości płynów. Za ksantynurię typu I odpowiadają bezpośrednio mutacje w genieXDH, który wpływa na aktywność oksydazy ksantynowej. Ksantynuria typu II może być wynikiem niewydolnego mechanizmu, który odpowiada za "wstawianie" atomu siarki w miejsca aktywne oksydazy ksantynowej i oksydazy aldehydowej (pokrewnego enzymu wykazującego podobną aktywność (np. przy konwersji allopurynolu do oksypurynolu)[17].
Sugeruje się, że inhibicja oksydazy ksantynowej może być dobrym mechanizmem pozwalającym na poprawę stanu zdrowia układu krwionośnego[18]. U pacjentów z przewlekłą obturacyjną chorobą płuc (POChP), którzy stosują allopurynol w celu zahamowania oksydazy ksantynowej obserwuje się spadek poziomu stresu oksydacyjnego, oksydacji glutationu oraz peroksydacji lipidów[19]. Stres oksydacyjny może być spowodowany przez wolne rodniki hydroksylowe i nadtlenek wodoru, które są produktami ubocznymi aktywności oksydazy ksantynowej[20].
Podwyższone stężenie kwasu moczowego w surowicy może być wskaźnikiem stanu zdrowia układu krwionośnego. Wykazano, że jest ono silnym czynnikiem predykcyjnym śmiertelności i konieczności przeszczepu serca[18]. Źródła tej zależności nie są jasne[21]. Typowymi przyczynami wysokiego stężenia kwasu moczowego w surowicy jest stan wzmożonego podziału komórek oraz przyjmowanie alkoholu[20].
Potwierdzono, że reaktywne formy azotu, takie jak nadtlenoazotyn (ONOO-), które mogą być wytwarzane przy współudziale oksydazy ksantynowej, reagują z DNA i białkami, powodując uszkodzenia komórek lub nawet wykazując toksyczność. Wykazano, że szlaki sygnałowe reaktywnych form azotu i reaktywnych form tlenu odgrywają kluczową rolę w funkcjonowaniu mięśnia sercowego oraz naczyń krwionośnych. Wyjaśnia to potrzebę badań oksydazy ksantynowej w ocenie stanu zdrowia układu krwionośnego[22].
Stwierdzono obecność zarówno oksydazy ksantynowej, jak i oksydoreduktazy ksantynowej w nabłonku oraz śródbłonku rogówki. Sugeruje się, że mogą być one zaangażowane w uszkodzenia oksydacyjne oka[23].
↑Ardan T, Kovaceva J, Cejková J. Comparative histochemical and immunohistochemical study on xanthine oxidoreductase/xanthine oxidase in mammalian corneal epithelium. „Acta Histochem”. 106 (1), s. 69–75, 2004. DOI: 10.1016/j.acthis.2003.08.001. PMID: 15032331.
↑Harrison R. Structure and function of xanthine oxidoreductase: where are we now?. „Free Radic. Biol. Med.”. 33 (6), s. 774–97, 2002. DOI: 10.1016/S0891-5849(02)00956-5. PMID: 12208366.
↑MG. Battelli, S. Musiani, M. Valgimigli, L. Gramantieri i inni. Serum xanthine oxidase in human liver disease. „Am J Gastroenterol”. 96 (4), s. 1194-1199, 2001. DOI: 10.1111/j.1572-0241.2001.03700.x. PMID: 11316169.
↑ abDawson J, Walters M. Uric acid and xanthine oxidase: future therapeutic targets in the prevention of cardiovascular disease?. „British Journal of Clinical Pharmacology”. 62 (6), s. 633, 2006. DOI: 10.1111/j.1365-2125.2006.02785.x. PMID: 21894646. PMCID: PMC1885190.
↑ abPeter Higgins, Dawson, Jesse; Walters, Matthew. The Potential for Xanthine Oxidase Inhibition in the Prevention and Treatment of Cardiovascular and Cerebrovascular Disease. „Cardiovascular Psychiatry and Neurology”. 2009, s. 1–9, 2009. DOI: 10.1155/2009/282059.
↑J Dawson, Quinn, T; Walters, M. Uric acid reduction: a new paradigm in the management of cardiovascular risk?. „Current medicinal chemistry”. 14 (17), s. 1879–86, 2007. DOI: 10.2174/092986707781058797. PMID: 17627523.
↑J. M. Zimmet, Hare, J. M.. Nitroso-Redox Interactions in the Cardiovascular System. „Circulation”. 114 (14), s. 1531–1544, 3 października 2006. DOI: 10.1161/CIRCULATIONAHA.105.605519.
↑Pacher P, Nivorozhkin A, Szabó C. Therapeutic effects of xanthine oxidase inhibitors: renaissance half a century after the discovery of allopurynol. „Pharmacol. Rev.”. 58 (1), s. 87–114, 2006. DOI: 10.1124/pr.58.1.6. PMID: 16507884. PMCID: PMC2233605.
↑Spector T. Oxypurinol as an inhibitor of xanthine oxidase-catalyzed production of superoxide radical. „Biochem. Pharmacol.”. 37 (2), s. 349–52, 1988. DOI: 10.1016/0006-2952(88)90739-3. PMID: 2829916.
↑S. Muraoka, T. Miura. Inhibition of xanthine oxidase by phytic acid and its antioxidative action. „Life Sci”. 74 (13), s. 1691-700, 2004. DOI: 10.1016/j.lfs.2003.09.040. PMID: 14738912.
↑Paul Cos, Ying, Li; Calomme, Mario; Hu, Jia P.; Cimanga, Kanyanga; Van Poel, Bart; Pieters, Luc; Vlietinck, Arnold J.; Berghe, Dirk Vanden. Structure−Activity Relationship and Classification of Flavonoids as Inhibitors of Xanthine Oxidase and Superoxide Scavengers. „Journal of Natural Products”. 61 (1), s. 71–76, 1998. DOI: 10.1021/np970237h.
↑WS Chang, Lee, YJ; Lu, FJ; Chiang, HC. Inhibitory effects of flavonoids on xanthine oxidase. „Anticancer research”. 13 (6A), s. 2165–2170, 1993. PMID: 8297130.